信号传导的受体分类及与受体相关的信息转导途径

受体是细胞膜上或细胞内能识别生物活性分子并与之结合的成分，他能把识别和接受的信号正确无误地放大并传递到细胞内部，进而引起生物学效应。 存在于细胞质膜上的受体称为膜受体，化学本质绝大部分是糖镶嵌蛋白；位于胞液和细胞核中的受体称为胞内受体，它们全部为DNA结合蛋白。

g蛋白的种类和途径 g蛋白的组成g蛋白的种类和途径 g蛋白的组成


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简述cGMP-PKG通路。阐述G蛋白介导的途径。胰岛素信号传导途径。LPC-DAG-PKC途径。简述G蛋白介导的第二

受体介导细胞信号通路包括： a.CAMP信号通路：由CM上的五种组分组成——激活型激素受体：Rs。与GDP结合的活化型调蛋白：Gs。腺苷酸环化酶：c。与GDP结合的抑制型调节蛋白：Gi。抑制型激素受体：Ri。

激素配体＋Rs→Rs构象改变暴露出与Gs结合位点→与Gs结合→Gs2变化排斥GDP结合GTP而活化→使三聚体Gs解离出α和βγ→暴露出α与腺苷酸环化酶结合位点→与A环化E结合并使之活化→

将ATP→CAMP→激活靶酶和开启基因表达→GTP水解，α恢复构象与A环化酶解离→C的环化作用终止→α和βγ结合回复。

b．PIP2信号通路：胞外signal＋膜受体→PIP2IP3＋DAG，IP3→内源钙→细胞溶质，胞内Ca2＋浓度升高→启动Ca2＋信号系统，DAGCM上活化蛋白激酶PKC→DG／PKC信号传递passwa。

扩展资料：

cGMP－PKG的信号途径：

动物细胞中还存在另一类与cAMP起拮抗作用的信使，称环磷酸鸟苷酸（cGMP），由鸟苷酸环化酶（GC）分解GTP产生，但其含量还不到cAMP的1／10。GC多为膜中可溶性蛋白，与受体分开存在。

已知细胞中的cGMP和cAMP浓度和作用相对抗，如当胞内cAMP水平升高时，糖原分解成葡萄糖；而cGMP升高则促葡萄糖合成糖原。

cAMP升高，促细胞基因表达合成特异蛋白质，使细胞分化；cGMP升高则加快DNA，细胞分裂增殖。但细胞中cGMP的信号机制仍知之甚少。仅知eGMP能活化胞内蚤白激酶G（G一激酶），磷酸化相应的靶蛋白，引起细胞效应。

在cGMP信号途径中研究较多的是脊椎动物视杆细胞的光感效应。在暗处，细翻内cGMP合成增加，cGMP水平升高，cGMP直接与视杆细胞膜上Na＋通道结合，使Na＋通道开放，Na＋入胞，使膜去极化，产生光感效应。

脑内谷氨酸受体的种类以及它们激活后各自介导的细胞内信号途径.

谷氨酸受体分成5类：A受体,AMPA受体,海人藻酸受体,ACPD受体,L-AP4受体.

其中A受体,AMPA受体,海人藻酸受体属于谷氨酸门控的阳离子通道,即离子型受体.

ACPD受体又称代谢型谷氨酸受体mGluRs,与L-AP4受体都属于G蛋白偶联的谷氨酸受体.

离子型受体在激活后,使得离子通道开放,Na离子和Ca离子内流,K离子外流.

G蛋白偶联的谷氨酸受体在激活后IP3和DAG升高或cAMP下降.

什么是植物G蛋白？有哪些植物G蛋白？它们有什么特点？它们在植物细胞信息转导中有什么作用

G蛋白是普遍存在于真核生物细胞中的一个GTP结合蛋白家族,根据其亚基组成及分子量大小,可将参与细胞信号转导的G蛋白分为异三聚体G蛋白,小G蛋白）

植物G蛋白的种类有：异三聚体G蛋白、植物小G蛋白、超大G蛋白

特点分别是：异三聚体G蛋白在SDS电泳图上可看到α、β、γ3种亚基。α亚基单体分子量为39~

52KDa,β和γ亚基分子量为35~37KDa和6~10KDa,各种G蛋白亚基中,α亚基别较大,β、γ亚基比较相似；植物小G蛋白是单体鸟苷酸结合蛋白,由一条多肽链构成,分子量较小,一般为20~30kDa。超大蛋白是通常多细胞生物G蛋白的两倍大。

在植物细胞信息转导中的作用：光信号转导和光控发育、激素信号转导（ABA信号转导、GA信号转导、生长素信号转导）、病原信号转导及花粉萌发及花粉管伸长的调控作用。

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偶联G蛋白受体信号传导途径可分为几种类型?其信号传导过程各有何特点?其作用机制怎样?举例说明之。

可分为cAMP信号途径;磷脂酰肌醇信号通路等。如当性信号(如)与肝细胞表面的β受体结合后,性受体(Rs)被激活,构象改变,暴露与性G蛋白(Gs)结合的部位;配体-受体复合物与Gs结合,Gs活化,Gs的α亚单位(Gsα)构象改变,转变结合GDP为GTP;Gsα-GTP复合物与βγ二聚体脱离,与腺苷酸环化酶(AC)结合;AC活化分解ATP产生cAMP,细胞内cAMP水平升高,cAMP充当细胞内的第二信使,磷酸化依赖cAMP的A-激酶(PKA),PKA被活化,依化无活性的靶蛋白,引起连锁反应和生物效应,使细胞内糖原分解成葡萄糖;随后Gsα即分解结合的GTP成为GDP和Pi;Gsα与GDP结合,和AC脱离,AC失活。Gsα又重新与βγ形成三聚体,恢复静息状态。此过程可反复进行,直到信号分子和受体分离为止。